李 佩 陈 见 余登航 李 清 王贵英 魏辉杰孙仁利 王守荣 孙艳红

(1. 武汉市农业科学院水产研究所, 武汉 430207; 2. 武汉轻工大学动物科学与营养工程学院, 武汉 430023)

黑尾近红鲌(Ancherythroculter nigrocaudaYih et Wu), 又名黑尾鲌、高尖等, 隶属鲤形目、鲤科、鲌亚科、近红鲌属, 是我国长江上游特有鱼类, 自然分布于四川、湖北等长江上游干支流, 具有较高经济价值, 随着生存环境变化和酷捕滥渔, 黑尾近红鲌自然资源日趋减少, 且小型化严重, 其种质资源趋于退化[1—3]。武汉市农业科学院水产研究所自2002年起开展黑尾近红鲌的生物学、苗种繁育和池塘养殖技术研究并进行推广养殖, 取得了一系列研究成果[4—7]。

鱼类苗种的氧气袋运输方式具有用水量少、成活率高等优点, 目前黑尾近红鲌苗种的长短途运输多采用此种方法。但在运输过程中, 合理的运输密度是保持良好的水质条件、降低鱼类应激水平和提高存活率的重要因素[8—10]。皮质醇的变化可以作为鱼类应激状态下的重要指标, 鱼类在应激状态下会导致皮质醇含量显著上升, 而乳酸和糖元的含量也会随应激程度的不同而呈现出规律性的变化, 已被广泛用作研究分析机体应激反应程度的重要指标[11—15]。

本实验旨在研究运输过程中, 不同运输密度及运输时间对水体的氨氮、溶氧、pH的影响, 以及黑尾近红鲌全鱼皮质醇、乳酸和糖元的变化情况, 以期获得合理的苗种运输密度, 为实际生产提供理论依据。

实验用黑尾近红鲌为武汉市农业科学院水产研究所人工培育获得的仔稚鱼, 实验前转至水泥池中人工驯养7d, 实验前1d停食并拉网锻炼。选取规格相近的仔稚鱼作为实验对象, 平均体长为(27.08±3.09) mm、平均体质量为(0.11±0.04) g。实验用水为实验鱼驯养所用池塘水, 水温(27.97±0.24)℃,pH(7.66±0.03), DO(6.49±0.40) mg/L, 总氨氮浓度(0.36±0.12) mg/L。运输用氧气袋为25 cm×50 cm聚乙烯尼龙袋。

采用双层聚乙烯尼龙袋充氧密封法运输[16], 每袋放入占尼龙袋有效容积三分之一的池塘水(约1.5 L),放入鱼后充纯氧至尼龙袋膨胀且平放后不变形为度, 并用橡皮筋捆扎后放入泡沫盒, 采用车辆不间断运输10h。采用3×5双因素实验, 运输密度为20、40和80 g/L, 运输时间为2h、4h、6h、8h和10h。共15个处理组, 每个处理组3个重复。

运输开始前, 即在0时随机选取黑尾近红鲌10尾作为初样品。在2h、4h、6h、8h和10h时, 取相应处理组, 测定水质指标并采集样品鱼。在打开氧气袋时, 立即采用HACH HQ40d便携式水质分析仪测定水体水温、DO及pH, 并保存500 mL水样用于测定总氨氮。各处理组均随机选取10尾鱼并迅速放入液氮保存, 用于测定全鱼皮质醇、乳酸及糖元含量。

检测样品鱼时在冰浴条件下加10倍于样品量的磷酸缓冲液(PBS)后用匀浆器将样本匀浆充分,离心5min(5000 r/min)收集上清待测。全鱼组织皮质醇含量采用鱼类皮质醇ELISA 试剂盒(CUSABIO公司)测定、乳酸及糖元含量采用南京建成生物工程研究所的试剂盒测定。氨氮采用纳氏试剂分光光度法进行测定[17]。

测定各处理组鱼的体长和体重(n=30), 并将每组取样剩余的鱼转入独立网箱(1 m3)中观察24h, 记录死亡数。

实验数据均以平均值±标准差(Mean±SD)表示,经Excel2010处理后, 以运输密度和运输时间作为自变量, 采用SPSS19.0软件进行双因素方差分析(Two-way ANOVA), 同时固定其中一个因素的水平, 做另外一个因素的单因素方差分析, Duncan氏法比较差异显著性, 显著水平P＜0.05。

密度和时间双因素对运输后黑尾近红鲌仔稚鱼的存活率具有显著交互作用(P＜0.05, 表 1)。在运输4h后, 20 g/L密度组的存活率显著高于40和80 g/L密度组, 但各密度组的存活率均保持在99.00%以上(图 1)。

表 1 双因素方差分析运输密度和运输时间对黑尾近红鲌皮质醇、乳酸、糖元含量及氧气袋内水质的影响Tab. 1 Summary of two-way ANOVA results of effects of density and time on cortisol, lactate and glycogen content and water quality

密度和时间双因素对运输后氧气袋水体的总氨氮浓度具有显著交互作用(P＜0.05, 表 1)。随着运输时间的延长, 各处理组水体总氨氮浓度均不断升高, 且20 g/L密度组的总氨氮浓度显著低于40和80 g/L密度组(图 2A)。

密度和时间双因素对运输后氧气袋水体的DO浓度具有显著交互作用(P＜0.05, 表 1)。20和40 g/L密度组的水体DO在不同运输时间后均维持在14 mg/L以上的较高水平, 80 g/L密度组的水体DO在不同运输时间均处于5 mg/L以下的较低水平(图 2B)。

密度和时间双因素对运输后氧气袋水体的pH无显著交互作用(P＞0.05, 表 1)。随着运输时间的延长, 各处理组水体pH均不断降低, 且20 g/L密度组的pH显著高于于40和80 g/L密度组(P＜0.05,图 2C)。

密度和时间双因素对运输后黑尾近红鲌的全鱼皮质醇含量具有显著交互作用(P＜0.05, 表 1)。在运输过程中, 不同密度处理组的全鱼皮质醇含量均显著升高, 在6h后出现降低, 但仍远高于运输前的水平(P＜0.05)。且在运输2h、4h、6h后, 40和80 g/L密度组的皮质醇含量显著高于20 g/L密度组(P＜0.05,图 3A)。

密度和时间双因素对运输后黑尾近红鲌的全鱼乳酸含量无显著交互作用(P＞0.05), 且影响运输过程中鱼体乳酸含量的主要因素为运输时间(表 1)。在运输过程中, 不同密度处理组的全鱼乳酸含量均显著升高, 显著高于运输前的含量(P＜0.05), 但在同一运输时间的不同密度组之间无显著差异(P＞0.05,图 3B)。

密度和时间双因素对运输后黑尾近红鲌的全鱼糖元含量无显著交互作用(P＞0.05), 且影响运输过程中鱼体糖元含量的主要因素为运输密度(表 1)。在运输2h后, 不同密度处理组的全鱼糖元含量较运输前均显著降低(P＜0.05), 之后均维持在稳定的水平。运输2h后不同密度组的全鱼糖元含量具有显著差异(P＜0.05), 但在4—10h运输时间下的不同密度组之间无显著差异(P＞0.05, 图 3C)。

图 2 运输后各处理组水体总氨氮、溶解氧及pHFig. 2 Total ammonia nitrogen, DO and pH of water after transportation

采用塑料袋充氧方式运输鱼苗, 袋内水体的水质状况是影响运输后鱼苗存活率及健康程度的重要因素之一, 主要包括氨氮、溶氧和pH等[18—20]。本研究发现在采用氧气袋运输黑尾近红鲌仔稚鱼时, 鱼体的新陈代谢会排出大量非离子氨, 从而导致袋内水体的总氨氮浓度急剧升高, 高密度运输10h后甚至可以达到(38.50±0.93) mg/L, 且水体氨氮浓度的差异主要由运输密度的不同所导致。对异育银鲫(Carassius auratus gibelio)[21]、翘嘴鲌(Culter alburnus)[8]、大黄鱼(Larimichthys crocea)[9]、银鲶(Rhamdia quelen)[22]的模拟运输研究实验也均发现水体总氨氮浓度随着运输时间和密度的增加显著上升。研究表明, 在相似水温下总氨氮对杂交鲌“先锋1号”[Erythroculter ilishaeformis(♀)×Ancherythroculter nigrocauda(♂) hybridF1]仔稚鱼的24hLC50为54.84 mg/L[23], 对不同溶氧条件下黄颡鱼(Pelteobagrus fulvidraco)幼鱼的24hLC50为(112.25—295.58) mg/L[24]。在本实验中, 10h运输后水体总氨氮浓度为(38.50±0.93) mg/L, 理论上应处于黑尾近红鲌可耐受范围内。

在不同运输时间后, 袋内水体溶氧浓度表现出极大的差异, 中低密度实验组显著高于高密度组。在运输过程中水体振荡, 将袋内的氧气更多地溶解到水体中, 造成中低密度下水体溶氧浓度保持在14.42—20.93 mg/L, 但较高运输密度下鱼体的呼吸作用导致80 g/L的运输密度组的溶氧仅能维持在2.42—2.88 mg/L。这表明在80 g/L的运输密度下,鱼体对水体溶氧的消耗速度高于袋内氧气溶解的速度。对翘嘴鲌的运输实验表明运输胁迫会导致其的耗氧率显著升高, 且随密度的增加而增大[8]。相关研究表明, 不同规格黑尾近红鲌幼鱼的平均窒息点为0.40 mg/L左右, 这也是80 g/L运输密度下黑尾近红鲌仔稚鱼没有出现缺氧窒息原因[25]。

在本实验中, 各组的水体pH均随运输时间显著降低, 80 g/L组在10h后降低至7.00±0.01。相关研究表明, 在运输胁迫下鱼类代谢速率等加快, CO2等代谢产物也随之增加并迅速溶于水体, 降低水体pH[26—29]。由于水体氨氮的毒性, 即分子氨的浓度与pH密切相关, 较低的pH也是黑尾近红鲌仔稚鱼能够耐受较高的总氨氮浓度的因素之一。我国主要养殖鱼类对水的pH变化有较大的适应能力, 适应pH为4.6—10.2, 适宜的pH为7—9, 若长期生活在pH 6.0和10.0的水中, 生长则会受到抑制[30]。在pH低于6.5的时候, 会对仔鱼的生长造成不利影响[31]。

图 3 运输后各处理组全鱼皮质醇、乳酸及糖元含量Fig. 3 Concentrations of cortisol, lactate and glycogen of Ancherythroculter nigrocauda after transportation

皮质醇是鱼体在受到外界环境刺激后所分泌的一种重要应激激素, 皮质醇的变化可以有效地反映其应激程度[32], 相关研究表明[13,33,34], 运输胁迫会导致鱼类的皮质醇含量显著升高。本实验表明不同运输密度下黑尾近红鲌仔稚鱼的全鱼皮质醇含量在运输中均不断升高, 并在6h时达到最高。在运输的后期, 可能由于鱼体对环境的适应, 皮质醇含量出现了降低, 但仍显著高于运输前的水平。据认为较高的密度, 即拥挤胁迫也会导致鱼类产生应激反应, 造成皮质醇激素含量的升高, 急性拥挤胁迫导致鲤的血液皮质醇浓度由对照组的18.6 ng/mL升高至302.3 ng/mL; 实验前草鱼血浆平均皮质醇浓度为6.23 ng/mL, 而在受到拥挤胁迫后最高达到超过100 ng/mL[35,36]。本实验同样显示80 g/L运输密度下全鱼皮质醇的含量显著高于较低的运输密度。同时运输时受到的应激也会导致鱼类体内皮质醇含量的升高, 相关研究发现在运输4h的时候不同种类鱼类的血浆皮质醇浓度均增加0.5倍至4.0倍[37]。对斑马鱼(Danio rerio)的运输实验发现在运输开始后全鱼皮质醇的含量迅速增加了10余倍[38]。在本实验中, 不同运输密度下黑尾近红鲌的全鱼皮质醇含量在运输6h时较运输前(44.50±3.11) ng/mL增加了1.12倍至1.67倍。

鱼体的乳酸主要是由肌肉在供氧不足的情况下,通过糖酵解产生。水体溶氧含量低、鱼体剧烈运动等都可导致鱼体乳酸含量升高[39]。对大鳞大麻哈鱼(Oncorhynchus tshawytscha)的研究中也发现, 运输胁迫会导致鱼体组织中乳酸含量的升高[40]。在本实验中, 不同运输密度下黑尾近红鲌的全鱼乳酸含量均随着运输时间的延长而出现明显升高, 但并不受运输密度的影响, 这表明其乳酸含量的升高主要由运输中的持续剧烈运动导致。相关运输实验表明,大黄鱼运输前全鱼乳酸含量为0.57 mmol/g, 而运输后各密度组升高至1.21—2.02 mmol/g[9]; 翘嘴鲌全鱼乳酸含量从运输前的1.50 mmol/g左右升高至运输后的3.00 mmol/g[41]。在本实验中, 不同运输密度下黑尾近红鲌的全鱼乳酸含量由运输前的1.41 mmol/g升高至至运输10h时的2.89—3.07 mmol/g。

糖元是由葡萄糖结合而成的支链多糖, 是动物体内糖的储存形式, 机体通过对糖元的分解来维持血糖浓度的相对稳定[35]。在本实验中, 黑尾近红鲌仔稚鱼全鱼的糖元含量除了显著低于运输前之外,不同运输时间和运输密度并未对其造成显著影响。相关研究[36—38]表明，环境胁迫如饥饿、运输、密度、温度、低氧等均会导致鱼体肝糖元和肌糖元的降低, 据此认为鱼类在胁迫状态下会促进糖元异生向机体供能。鱼类糖元主要贮存在肝脏和肌肉组织中, 对刀鲚(Coilia nasus)的研究表明在28℃下其肝脏组织和肌肉组织中糖元含量分别为2.0和0.2 mg/g[46]; 在相同水温下银鲳(Pampus argenteus)肝脏和肌肉组织中糖元含量分别为1.26—2.39和0.24—0.37 mg/g[47]; 在不同运输密度和盐度下大黄鱼幼鱼全鱼的糖元含量由运输前的4.37 mg/g降低至运输后的1.5—2.0 mg/g[9]。在本实验中, 在不同运输密度下黑尾近红鲌全鱼的糖元含量由运输前的1.50 mg/g降低至运输后的0.85—1.09 mg/g。

运输密度和时间对黑尾近红鲌仔稚鱼的全鱼皮质醇、存活率、水体总氨氮和溶解氧产生了显著的影响, 且存在显著交互作用。但无论是高密度组还是低密度组的平均死亡率都在1%以下, 说明了黑尾近红鲌仔稚鱼对运输胁迫具有一定的抗逆性。采用本实验的运输条件, 在运输10h的情况下,黑尾近红鲌仔稚鱼可以承受80 g/L的运输密度所带来的应激反应, 且不会引起运输后仔稚鱼发生大量死亡, 但80 g/L的运输密度会导致氧气袋内水体水质严重恶化, 溶氧极低且氨氮浓度极高, 存较大风险。综合考虑实际操作中的运输成本等因素, 黑尾近红鲌仔稚鱼的运输密度以40 g/L较为安全; 但在运输时间不超过10h或采取空运方式时, 可适当增大运输密度以节约成本。

水生生物学报2020年2期